0 5 процентный моющий раствор как приготовить

ПСО с помощью 0,5% моющего раствора

Порядок действий:

Примечание: в настоящее время ПСО может осуществляться с помощью специальной аппаратуры – ультразвуковых моек и моечных машин, которые исключают ручной труд и позволяют повысить качество обработки ИМН, а также обеспечивают безопасность медицинского персонала и пациентов.

Варианты приготовления 0,5% моющего раствора

(из расчета на 1 литр)

Контроль качества предстерилизационной очистки

Контроль качества предстерилизационной очистки инструментов, шприцев, игл и других изделий медицинского назначения проводят путем постановки азопирамовой (универсальной) пробы – на наличие синтетических моющих средств и остатков крови.

Источник

Техника приготовления моющих растворов

В зависимости от выбранного состава, в емкости смешиваются все компоненты раствора до полного их растворения. При расчетах указывается количество компонентов на 1 л, для приготовления другого количества раствора все компоненты увеличиваются во столько раз, во сколько увеличивается количество раствора.

Приготовление моющих растворов с перекисью водорода (вариант А: вода + синтетическое моющее средство (СМС) + перекись водорода). Для приготовления 1 л моющего раствора этого состава необходимо взять 5 гр СМС Астра, Айна, Прогресс, Маричка, Лотос или Лотос – автомат ( при применении средства «Лотос» добавляют ингибитор коррозии олеат натрия (1,4 гр. на 1 литр воды), перекись водорода 3-40 % в количестве, зависящим от концентрации (см таблицу) и воды доливаем столько, сколько необходимо для получения объема раствора в 1 л

Задача 1. Приготовить 1 л моющего раствора с 6% перекисью водорода и СМС Астра

Задача 2. Приготовить 1 л моющего раствора с 40 % перекисью водорода и СМС Прогресс

Задача 3. Приготовить 4 л моющего раствора с 6% перекисью водорода и СМС Астра

Приготовление моющих растворов с СМС Биолот, Зифа или Луч (вариант Б). В связи с тем, что эти СМС в своем составе содержат перекись водорода, для приготовления 1 л моющего раствора необходимо взять 5 гр СМС и воды доливаем столько, сколько необходимо для получения объема раствора в 1 л

Задача 4. Приготовить 1 л моющего раствора с СМС Зифа

Ответ: необходимо взять: 5 гр СМС Зифа и 995 мл воды (1л = 1000 мл – 5).

Задача 5. Приготовить 1 л моющего раствора с СМС Луч

Ответ: необходимо взять: 5 гр СМС Луч и 995 мл воды (1л = 1000 мл – 5).

Задача 6. Приготовить 5 л моющего раствора с СМС Зифа

Ответ: необходимо взять: 5 гр*5= 25 гр СМС Зифа и 4 975 мл воды (5л = 5000 мл –25).

Приготовление 2 и 3 % растворов соды (вариант В). Для приготовления 1 л моющего раствора с содой необходимо взять пищевую соду и воды доливаем столько, сколько необходимо для получения объема раствора в 1л.

Количество соды вычисляем по формуле:

Задача 7. Приготовить 1 л 2 % р-ра соды

Ответ: необходимо взять 20 гр соды ( 2 * 1л * 10) и 980 мл воды (1л = 1000 мл – 20).

Ответ: необходимо взять 6 0 гр. соды (2 * 3л * 10) и 2940 мл воды (3000 мл – 60 гр)

Приготовление моющих растворов из средств, обладающих моющим и дезинфицирующим действием (вариант Г) проводят из концентрата и воды по инструкции к средству

Источник

Предстерилизационная очистка. Этапы, контроль качества предстерилизационной очистки

Приготовление моющих растворов

1. Однократного применения (с моющим средством «Биолот»):

5 гр. моющего средства «Биолот + 995 мл воды. Температура моющего раствора 40-45°С. Подогревается однократно. После использования – утилизируется.

2. Многократного применения (с моющим средством «Лотос» «Прогресс» и добавлением перекиси водорода различной концентрации).

5 гр.моющего средства «Лотос» или «Прогресс» + 14 мл 33% перекиси водорода + 981мл воды;

5 гр.моющего средства «Лотос» или «Прогресс» + 16 мл 30% перекиси водорода + 979мл воды;

5 гр.моющего средства «Лотос» или «Прогресс» + 17 мл 27,5% перекиси водорода + 978мл воды;

Температура моющего раствора многократного применения – 45-50°С; раствор подогревается до 6 раз; используется в течение смены (до момента, пока не потерял цвет). Температура моющего раствора в процессе проведения ПО не поддерживается.

Контроль качества предстерилизационной очистки изделий.

1. Контроль качества предстерилизационной очистки проводят центры Государственного санитарно — эпидемиологического надзора и дезинфекционные станции не реже 1 раза в квартал.

Самоконтроль в ЛПУ проводят: в централизованных стерилизационных (ЦС) ежедневно, в отделениях — не реже 1 раза в неделю; организует и контролирует его старшая медицинская сестра (акушерка) ЦС (отделения).

2. Контролю подлежит: в ЦС — 1% от каждого наименования изделий, обработанных за смену, в отделениях — 1% одновременно обработанных изделий каждого наименования, но не менее 3 единиц.

3. Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают путем постановки азопирамовой пробы на наличие остаточных количеств крови, а также путем постановки фенолфталеиновой пробы на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств.

Азопирамовая проба.

Приготовление исходного раствора.

Для приготовления 1 л (куб. дм) исходного раствора азопирама отвешивают 100 г амидопирина и 1,0-1,5 г солянокислого анилина, смешивают их в сухой мерной посуде и доводят до объема 1 л (куб. дм) 95% этиловым спиртом. Смесь тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов.

Исходный раствор азопирама следует хранить в плотно закрытом флаконе в темноте. Допустимый срок хранения исходного раствора азопирама составляет 2 месяца при температуре 4 град. С (в холодильнике); при комнатной температуре (20+/-2 град. С) — не более 1 месяца. Умеренное пожелтение исходного раствора в процессе хранения без выпадения осадка не снижает рабочих свойств раствора.

Приготовление реактива азопирам.

Перед постановкой пробы готовят реактив азопирам, смешивая равные объемные количества исходного раствора азопирама и 3% раствора перекиси водорода. Реактив азопирам можно хранить не более 2 часов. При более длительном стоянии может появиться розовое спонтанное окрашивание реактива. При температуре выше +25 град. С раствор розовеет быстрее, поэтому его необходимо использовать в течение 30-40 мин. Не следует подвергать проверке горячие инструменты, а также хранить реактив азопирам на ярком свету и вблизи нагревательных приборов.

В случае необходимости пригодность реактива азопирам проверяют следующим образом: 2-3 капли реактива наносят на пятно крови. Если не позже чем через 1 мин появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к употреблению; если окрашивание в течение 1 мин не появляется, реактивом пользоваться не следует.

Фенолфталеиновая проба.

Готовят 1% спиртовой раствор фенолфталеина на 95% этиловом спирте; раствор хранят во флаконе с притертой пробкой в холодильнике в течение месяца.

Методика постановки проб.

Контролируемое изделие протирают марлевой салфеткой, смоченной реактивом, или наносят 2-3 капли реактива на изделие с помощью пипетки.

В шприцы вносят 3-4 капли рабочего раствора реактива и несколько раз продвигают поршнем для того, чтобы смочить реактивом внутреннюю поверхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где чаще всего остается кровь; реактив оставляют в шприце на 1 мин, а затем вытесняют на марлевую салфетку. При проверке качества очистки игл реактив набирают в чистый, не имеющий следов коррозии шприц. Последовательно меняя иглы, через них пропускают реактив, вытесняя 3-4 капли на марлевую салфетку.

Качество очистки катетеров и других полых изделий оценивают путем введения реактива внутрь изделия с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделий на 1 мин, после чего сливают на марлевую салфетку. Количество реактива, вносимого внутрь изделия, зависит от величины изделия.

Учет результатов постановки проб.

При положительной азопирамовой пробе

в присутствии следов крови немедленно или не позднее, чем через 1 мин, появляется вначале фиолетовое, затем быстро в течение нескольких секунд переходящее в розово — сиреневое или буроватое окрашивание реактива.

Азопирам, кроме гемоглобина, выявляет наличие на изделиях остаточных количеств пероксидаз растительного происхождения (растительных остатков), окислителей (хлорамина, хлорной извести, стирального порошка с отбеливателем, хромовой смеси для обработки посуды и др.), а также ржавчины (окислов и солей железа) и кислот. При наличии на исследуемых изделиях ржавчины и указанных окислителей наблюдается бурое окрашивание реактива, в остальных случаях происходит окрашивание в розово — сиреневый цвет.

При постановке азопирамовой пробы окрашивание реактивов, наступившее позже чем через 1 мин после постановки пробы, не учитывается.

При положительной фенолфталеиновой пробе

о наличии на изделиях остаточных количеств щелочных компонентов моющего средства свидетельствует появление розового окрашивания реактива.

В случае положительной пробы на кровь или на остаточные количества щелочных компонентов моющих средств, всю группу контролируемых изделий, от которой отбирали контроль, подвергают повторной очистке до получения отрицательных результатов.

Результаты контроля отражают в журнале по форме N 366/у.

Оборудование и выбор моющих средств

В настоящее время на территории РФ зарегистрированы и разрешены к использованию два вида оборудования для механической обработки, имеющие существенные различия. Принцип работы одного основан на использовании ультразвука. Предстерилизационная очистка инструментов в другом виде оборудования осуществляется моющими средствами, не содержащими в своем составе дезинфекционных компонентов, так как дезинфекция проводится термическим способом. Этот вид оборудования в медицинской среде носит название термодезинфектора.

Второй вид оборудования обладает явными преимуществами перед ультразвуковыми аппаратами, т. к. в термодезинфекторе, по сути, осуществляется полный цикл обработки медизделий и инструментария – дезинфекция, очистка, ополаскивание, сушка. На долю человека остается корректно провести загрузку инструментов, а затем правильно их извлечь.

Еще один важный нюанс – это подбор моющих средств. Разрешены для использования два вида: на основе ПАВ (поверхностно-активных веществ) и ферментов. Первые обладают высокими моющими качествами и более востребованы на рынке. Однако у этих средств имеются некоторые недостатки.

Во-первых, для них характерно высокое пенообразование, а это может стать критичным фактором ввиду несовместимости моющего состава и оборудования при механической очистке.

Во-вторых, после моющих, произведенных на основе ПАВ, на обработанной поверхности медицинских изделий и инструментов остается пленка, для смывания которой потребуется особенно тщательное ополаскивание.

В-третьих, чтобы получить самый оптимальный результат, требуется поддерживать определенную температуру, при которой проводится предстерилизационная очистка.

Моющие вещества, изготовленные на основе ферментов, обладают возможностями разрушения не только стенок бактериальных клеток, белковых оболочек вирусов, но и биопленки. Помимо этого, для ферментированных моющих средств характерно низкое пенообразование, и они не теряют активности при комнатных температурах.

Пробы положительные…

Если хотя бы одна из проводимых проб даст положительный результат, значит, на обработанных поверхностях присутствуют либо кровяные загрязнения, либо остатки моющих средств, с применением которых проводилась обработка. В таких случаях все изделия и инструменты подлежат повторной обработке до тех пор, пока контроль качества предстерилизационной очистки не даст отрицательных результатов (т. е. пробы не будут изменять цвет).

Контролю качества и эффективности предстерилизационной очистки должен подвергаться 1 % каждого инструмента и вида изделий, которые проходят обработку в течение суток. Специалисты дезинфекционных или санитарно-эпидемиологических станций должны контролировать качество предстерилизационной обработки в лечебных и лечебно-профилактических учреждениях не реже, чем 1 раз в течение квартала.

Этапы предстерилизационной очистки

1. Замачивание изделий в моющем растворе на время определенное инструкцией к каждому конкретному раствору или кипячение в растворе (или использование механизированного метода с применением ультразвука);

2. Мойка каждого изделия в моющем растворе при помощи ерша, щетки, ватно-марлевого тампона — 0,5 минут на изделие (при ручной обработке); 3. Ополаскивание под проточной водой до исчезновения щелочности — от 5 до 10 минут; 4. Ополаскивание (обессоливание) в дистиллированной воде из расчета: на 2 набора инструментов — 1 литр дистиллированной воды; 5. Сушка горячим воздухом при температуре 85-90°. Предстерилизационную очистку проводят ручным или механизированным способом (с помощью специального оборудования, например, ультразвуковых установок отечественного — «Серьга», «Кристалл-5», «УЗВ», «Ультраэст», «УВ-1», «УЗУМИ-15» — или импортного производства). Воздействие ультразвуковых колебаний значительно ускоряет отслаивание и разрушение загрязнений на поверхности изделий. Вышеуказанные установки различаются не только по рабочей частоте ультразвуковых генераторов (33 кГц и 44 кГц), но и по объему и конфигурации рабочих ванн. Установка «Кристалл-2,5» предназначена только для обработки стоматологического инструментария. Установки «Кристалл-15» и «УЗУМИ-15», имеющие ванны объемом 15 литров, предназначены для предстерилизационной очистки различных типов изделий. создана вакуумная установка «УВГ10-50» для предстерилизационной очистки изделий с труднодоступными каналами и полостями. Для обработки стоматологического инструментария выпускает настольную установку «ULTRAEST-М». При использовании ручного способа применяют емкости из пластмасс, стекла или покрытые эмалью (без видимых повреждений эмали).

Предстерилизационная очистка ручным способом может осуществляться с применением замачивания в моющем растворе или с применением кипячения в растворе моющего средства.

Механизированный способ осуществляется согласно инструкции по эксплуатации, прилагаемой к конкретному оборудованию. При наличии у средства, наряду с моющими, также и антимикробных свойств предстерилизационная очистка изделий на этапе замачивания или кипячения в растворе может быть совмещена с дезинфекцией в соответствии с таблицей, представленной ниже.

Предстерилизационная очистка и дезинфекция, совмещенные в одном процессе:

Контроль качества: остатки моющих средств

Все этапы предстерилизационной очистки при любом способе обработки (ручной, совмещенный, механический) завершаются ополаскиванием медицинских изделий и инструментов. Качественно ли проведен этот этап, можно определить с помощью фенолфталеиновой пробы. 1-2 капли однопроцентного спиртового раствора фенолфталеина наносят на обработанное (т. е. вымытое) изделие. Если оно вымыто недостаточно качественно, и на его поверхности присутствуют остатки моющих средств, проба приобретет розовый оттенок.

Источник

Приготовление растворов моющего средства

Надеть спецодежду и средства индивидуальной защиты — маску, очки, пер­чатки.

• мерную емкость 5 г, 17 мл;

• 5 г любого моющего средства: «Лотос», «Лотос-автомат», «Астра», «Про­гресс», «Маричка», «Новость» + 17 мл пергидроля (мерная емкость с маркировкой «Пергидроль») и долить питьевой воды до 1 л. Температу­ра 50—55 °С—15 мин.

Этот раствор может быть использован в течение суток (можно подогре­вать до 6 раз). Если цвет раствора изменился на розовый (появились хло­пья), использовать его нельзя.

В дистиллированной воде быстро развиваются микробы, поэтому применя­ют питьевую воду.

Температура использованных растворов не должна превышать 50—55 °С.

Если отсутствует пергидроль, можно добавить 170 мл 3 % перекиси водорода.

В эти растворы часто вводят ингибиторы коррозии— олеат натрия (на 1 л моющего раствора 1,4 г, так как и перекись, и пергидроль обладают корро­зирующим действием).

Замачивание в моющем растворе производят при полном погружении. Экс­позиция (время пребывания) в моющем растворе— 15 мин.

При необходимости изделия медицинского назначения промывают ершом или ватно-марлевым тампоном, затем обязательно промывают изделия под теплой проточной водой или погружают в емкости с водой.

При проведении промывания медицинскому персоналу необходимо строго соблюдать минимальное время отмывки, рекомендуемое в методических указаниях на каждый конкретный препарат.

Третий режим предстерилизационной очистки

«Лизетол» АФ можно применять для дезинфекции в течение 7 сут. после приготовления.

Замачивают изделия медицинского назначения в растворе комнатной температуры.

Изделия из металла и стекла замачивают:

• в 2 % растворе— 60 мин;

• в 4 % растворе — 30 мин.

Изделия из полимерных материалов и резины замачивают;

• в 2 % растворе — 60 мин;

• в 4 % растворе — 30 мин.

После замачивания этапы повторяют.

Режимы предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения с помощью нейтрального анолита ручным способом

В случае проведения дезинфекции изделий медицинского назначения, ис­ключая клизменные наконечники, нейтральным анолитом с концентрацией ак­тивного хлора 0,03 % предстерилизационная очистка может быть совмеще­на с дезинфекцией.

Перечень средств для дезинфекции и предстерилизационной очистки в один этап:

• «Деконекс-денталь», «ББ», температура комнатная, экспозиция — 30 мин, отмывка проточной водой — 2 мин;

• «Виркон» — 2% раствор, температура комнатная, экспозиция — 10 мин, отмывка проточной водой—3 мин;

• «Дюльбак-ДТБ/Л» — 2% раствор, температура комнатная, экспозиция — 45 мин, отмывка проточной водой — 10 мин;

• «Аламинол», «Лизетол-АФ», температура комнатная, экспозиция — 60 мин, отмывка проточной водой — 10 мин.

Работу с этими средствами необходимо вести в соответствии с методиче­скими указаниями.

Контроль качества предстерилизационной очистки

Контролю качества предстерилизационной очистки подвергают не менее 1 % одновременно обработанных изделий одного наименования, но не менее 3—5 единиц.

Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают путем поста­новки проб на наличие:

• следов хлора или других дезинфицирующих средств;

• крови — азопирамовой, амидопириновой;

• остаточных щелочных компонентов моющего средства — фенолфта­леиновой;

• жировых, белковых остатков — судан-3.

С введением «Методических рекомендаций по контролю качества предсте­рилизационной очистки изделий медицинского назначения с помощью реакти­ва азопирама» была отменена бензидиновая проба (методические рекомен­дации утверждены 26.05.1988 г., № 28-6/13).

Заключительным этапом предстерилизационной очистки изделий медицин­ского назначения является контроль качества отмывки от кровяных, белковых, жировых и прочих загрязнений с помощью специальных реактивов.

Контроль могут проводить на рабочих местах медсестры (самоконтроль), а также старшая медсестра и заведующий центральным стерилизационным от­делением.

Азопирамовая проба

Азопирам хранят в плотно закрытом флаконе при температуре 4 °С в холодильнике в течение 2 мес, в темном месте при комнатной температуре — не более 1 мес. Умеренное потемнение реактива без выпадения осадка не снижает его качества.

Пригодность рабочего раствора азопирама медсестра проверяет следую­щим образом. Наносят 2—3 капли раствора на участок крови;

• если не позже чем через 1 мин появится фиолетовое окрашивание, бы­стро (в течение нескольких секунд) переходящее в розово-сиреневое или буроватое, реактив годен к использованию;

• если окрашивание в течение 1 мин не появится, реактивом пользовать­ся нельзя («Методические рекомендации по организации ЦСО в ЛПУ» № 15-6/8 от 21.12.1989 г., Приказ МЗ СССР № 720 от 31.07.1978 г.).

Азопирам выявляет также наличие хлорамина, хлорной извести, стираль­ного порошка с отбеливателем, ржавчины.

Реактив готовят непосредственно перед проведением пробы на качество предстерилизационной очистки.

Проведение пробы

На инструмент наносят 2—3 каплираствора реактива или протирают там­поном, смоченным в растворе реактива: азопирама, амидопирина, фенолфта­леина, судана-3.

При наличии крови проводят пробу с амидопирином и азопирамом, при этом происходит окрашивание:

• с азопирамом— в течение 1 мин появляется фиолетовое, затем розово-синее или буроватое окрашивание; если буроватое окрашивание про­должается более 1 мин, то реакция не учитывается; буроватое окра­шивание возникает при наличии ржавчины и хлорсодержащих окислите­лей, в остальных случаях окрашивание розово-синее; с амидопирином — сине-зеленое (положительная реакция).

При наличии остатков моющего средства проводят пробы:

• с фенолфталеином: 1—2 капли 1% спиртового раствора наносят на из­делия, при наличии остатков моющего средства возникает розовое окра­шивание;

Для контроля труднодоступных мест применяют ватные турунды, смо­ченные в реактиве.

Для проверки шприца в него наливают реактив и несколько раз продвигают поршень, смачивая стенки, затем вытесняют реактив на марлевую салфет­ку или вату.

Для проверки игл в шприц наливают реактив, не давший положительной пробы, последовательно сменяя иглы, пропускают реактив через них, вытес­няя по 3—4 каплина марлевую салфетку.

Для проверки катетеров и других полых изделий в них вводят реактив пи­петкой (чистым шприцем), после непродолжительного контакта реактива его сливают на марлевую салфетку.

Самоконтроль предстерилизационной очистки изделий в лечебно-профи­лактических учреждениях должен проводиться ежедневно.Результаты контро­ля отражают в журнале ф. 257/у.

При положительных пробах всю группу проверяемых изделий, из которых отбирали инструмент на контроль, подвергают повторной обработке до получения отрицательных результатов (при азопирамовой, амидопирамовой, судановой пробах—предстерилизационная очистка, при фенолфта­леиновой — отмывка водой).

В настоящее время широкое применение нашел контейнер КДС-КРОНТ-11/20, предназначенный для предстерилизационной очистки, химической дезинфек­ции и стерилизации хирургического инструмента общего назначения, а также для гинекологического, урологического и эндоскопического инструмента. Осо­бенно эффективен при обработке следующих приборов и инструментов:

• наборов операционного инструментария;

• большого количества обрабатываемых однотипных инструментов в круп­ных отделениях.

Контейнер находит применение и для утилизации мягких и особенно жест­ких медицинских отходов, в качестве тары для сбора и транспортировки отхо­дов внутри больницы.

Контейнер состоит из ванны, перфорированного поддона и крышки, плотно прилегающей к ванне. Все это снижает утомляемость медицинского персонала при многократно повторяющихся операциях.

Широкая внутренняя полость контейнера (перфорированного поддона) по­зволяет размещать внутри медицинские приборы и изделия, для которых яв­ляется важным сохранение необходимого радиуса изгиба отдельных элемен­тов и частей при укладке в контейнер для химической обработки дезинфици­рующими растворами.

Устройство фиксирования на ванне перфорированного поддона для стекания дезинфицирующего раствора конструктивно выполнено таким образом, что позволяет слить отработанные растворы без их отекания на место уста­новки контейнера (стол). Перфорированный поддон имеет боковые выступы для комфортной установки и выемки его из ванны контейнера.

— плотно прилегающая крышка обеспечивает сохранность и безопасность биологического материала;

— ребра жесткости на корпусе обеспечивают надежность и прочность ук­ладки;

— при использовании укладки-контейнера «Кронт-УКП» наличие двух ручек исключает возможность опрокидывания транспортируемых проб биоло­гического материала в пробирках и флаконах.

Источник